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摘要：目的：深入分析不同血液检测方式对控制输血风险残余度所产生的实际影响。
方法：随机选取7200份血液成品并开展HCV抗体、HIV抗体、HBsAg测定工作，然后针对HBsAg阴性血液再进行HBV DNA、HBV等四项指标测定。
结果：再次检测后抗HCV不符合机率为0.36%，抗HIV结果为0，HBsAg则为0.42%，两次检测数据之间存在显著统计学上的差异（P<0.05）；396份HBsAg阴性血液在接受的PCR检测后得到2.53%的HBVDN阳性机率，HBV四项指标，即HBeAg、HBeAb、HBsAb、HBcAb的阳性机率是1%，HBV DNA定量数值在104～106cp/ml之间。
结论：想要获得良好的输血风险残余度控制效果就必须选择PCR等先进检测方式并持续其施行水平及质量。
关键词：血液检测方法 控制输血风险残余度 实际影响 探讨分析
【中图分类号】R9 【文献标识码】B 【文章编号】1671-8801（2013）06-0402-01
输血风险残余度能够为传染性疾病的传播提供广阔平台，因此做好该方面的控制尤为重要，必须通过制定并落实严格检测机制来确保输血安全性[1]。本文对2012年12月～2013年5月期间7200份库存血液标本检测方式及结果进行全面探讨，现报告如下。
1 基础资料与方法
1.1 基础资料。选择2012年12月～2013年5月期间7200份库存血液标本成品作为研究对象，每周都进行两次随机抽取测定，每次检测份数为150份，检测内容包括HCV抗体、HIV抗体、HBsAg检测，然后再对396份HBsAg阴性血液进行HBV DNA、HBV四项指标检测。
1.2 方法。HIV抗体、HCV抗体检测采用ELISA法（试剂为美国ABBOTT公司生产），HBV五项检测采用微粒子发光法；HBV DNA PCR试剂盒由深圳匹基生物工程公司和华润生物公司生产。TRITURUS全自动酶标仪为GRIFOLS公司产品；AXSYYM全自动系统为ABBOTT公司产品；5700型荧光PCR仪为美国ABI公司产品。实验方法按试剂说明书进行，使用自动检测系统进行检测[2]。
2 结果
再次检测后抗HCV不符合机率为0.36%，抗HIV结果为0，HBsAg则为0.42%，两次检测数据之间存在显著统计学上的差异（P<0.05）；396份HBsAg阴性血液在接受的PCR检测后得到2.53%的HBVDNA阳性机率，HBV四项指标，即HBeAg、HBeAb、HBsAb、HBcAb的阳性机率是1%，HBVDNA定量数值在104～106cp/ml之间。
3 讨论
在临床医学领域中相关管理人员花费大量精力及时间对血液采集、供应、输用等方面进行严格细致的管理，希望以此来降低输血奉献残余度。虽然已经有HCV抗体、HIV抗体及初复检制度，检测水平获得明显提升，但是由于检测方式、技术、试剂等因素之间存在差异，整体控制效果仍然存在很大的进步空间，因此控制输血风险残余度问题必须得到重视[3]。
本次研究共检测396份HBsAg阴性血液中的HBV DNA情况，有10份显示阳性结果，占总人数2.53%，含量都低于106cp/ml。这10份阳性结果血液HBV四项指标检测显示3份确实属于阳性范围，HBV全阴性数量为7份，占总人数1.77%。本次研究数据稍微高于以往文献报道，可能受到检测方式特异性及灵敏度影响，也证实了一些HBV感染人群由于处在不同感染阶段，其血液循环系统里所含有的HBsAg量偏低，或者是正处在窗口阶段，由于存在抗-HBs而呈现血清HBsAg阴性状态[4]。HBV DNA检测结果为阳性人群的实际结果较弱，显示可能是病毒复制频率较低阶段，血液循环系统中只含有少量病毒，由此可知选择适宜的检测方式对控制输血风险残余度存在重大意义。本次396份HBsAg阴性血液在接受的PCR检测后得到2.53%的HBVDNA阳性机率，充分体现了核酸扩增检测技术独特的优势，目前根据我国输血领域发展情况，应考虑将其应用于血站筛检工作中[5]。
综上所述，输血风险残余度控制水平的高低在于是否挑选到具有较高灵敏度及特异性的检测方式，PCR检测技术在这方面具有理想的使用价值，在临床实际操作中相关工作者应该契合科学技术发展步伐，积极提高这种检测方式的应用频率。
参考文献
[1] 曲宏晶，沈奇荣，钟传村.降低临床输血风险和输血误差的应对措施[J].现代预防医学.2008.32（25）.284-285
[2] 武峰.输血面临的风险与安全输血的对策[J].中国热带医学.2007.19（15）.861-862
[3] 张朝云，俞丽丹，吴华平.血浆输注前常规次侧配血以提高输血安全的实践[J].中国输血杂志.2011.32（03）.715-716
[4] 秦欣，张三明.临床输血风险分析与预防措施[J].当代医学.2010.29（13）.438-439
[5] 陈映.2005年至2009年我院临床输血统计分析[J].内蒙古中医药.2010.31（11）.379-380
方法：随机选取7200份血液成品并开展HCV抗体、HIV抗体、HBsAg测定工作，然后针对HBsAg阴性血液再进行HBV DNA、HBV等四项指标测定。
结果：再次检测后抗HCV不符合机率为0.36%，抗HIV结果为0，HBsAg则为0.42%，两次检测数据之间存在显著统计学上的差异（P<0.05）；396份HBsAg阴性血液在接受的PCR检测后得到2.53%的HBVDN阳性机率，HBV四项指标，即HBeAg、HBeAb、HBsAb、HBcAb的阳性机率是1%，HBV DNA定量数值在104～106cp/ml之间。
结论：想要获得良好的输血风险残余度控制效果就必须选择PCR等先进检测方式并持续其施行水平及质量。
关键词：血液检测方法 控制输血风险残余度 实际影响 探讨分析
【中图分类号】R9 【文献标识码】B 【文章编号】1671-8801（2013）06-0402-01
输血风险残余度能够为传染性疾病的传播提供广阔平台，因此做好该方面的控制尤为重要，必须通过制定并落实严格检测机制来确保输血安全性[1]。本文对2012年12月～2013年5月期间7200份库存血液标本检测方式及结果进行全面探讨，现报告如下。
1 基础资料与方法
1.1 基础资料。选择2012年12月～2013年5月期间7200份库存血液标本成品作为研究对象，每周都进行两次随机抽取测定，每次检测份数为150份，检测内容包括HCV抗体、HIV抗体、HBsAg检测，然后再对396份HBsAg阴性血液进行HBV DNA、HBV四项指标检测。
1.2 方法。HIV抗体、HCV抗体检测采用ELISA法（试剂为美国ABBOTT公司生产），HBV五项检测采用微粒子发光法；HBV DNA PCR试剂盒由深圳匹基生物工程公司和华润生物公司生产。TRITURUS全自动酶标仪为GRIFOLS公司产品；AXSYYM全自动系统为ABBOTT公司产品；5700型荧光PCR仪为美国ABI公司产品。实验方法按试剂说明书进行，使用自动检测系统进行检测[2]。
2 结果
再次检测后抗HCV不符合机率为0.36%，抗HIV结果为0，HBsAg则为0.42%，两次检测数据之间存在显著统计学上的差异（P<0.05）；396份HBsAg阴性血液在接受的PCR检测后得到2.53%的HBVDNA阳性机率，HBV四项指标，即HBeAg、HBeAb、HBsAb、HBcAb的阳性机率是1%，HBVDNA定量数值在104～106cp/ml之间。
3 讨论
在临床医学领域中相关管理人员花费大量精力及时间对血液采集、供应、输用等方面进行严格细致的管理，希望以此来降低输血奉献残余度。虽然已经有HCV抗体、HIV抗体及初复检制度，检测水平获得明显提升，但是由于检测方式、技术、试剂等因素之间存在差异，整体控制效果仍然存在很大的进步空间，因此控制输血风险残余度问题必须得到重视[3]。
本次研究共检测396份HBsAg阴性血液中的HBV DNA情况，有10份显示阳性结果，占总人数2.53%，含量都低于106cp/ml。这10份阳性结果血液HBV四项指标检测显示3份确实属于阳性范围，HBV全阴性数量为7份，占总人数1.77%。本次研究数据稍微高于以往文献报道，可能受到检测方式特异性及灵敏度影响，也证实了一些HBV感染人群由于处在不同感染阶段，其血液循环系统里所含有的HBsAg量偏低，或者是正处在窗口阶段，由于存在抗-HBs而呈现血清HBsAg阴性状态[4]。HBV DNA检测结果为阳性人群的实际结果较弱，显示可能是病毒复制频率较低阶段，血液循环系统中只含有少量病毒，由此可知选择适宜的检测方式对控制输血风险残余度存在重大意义。本次396份HBsAg阴性血液在接受的PCR检测后得到2.53%的HBVDNA阳性机率，充分体现了核酸扩增检测技术独特的优势，目前根据我国输血领域发展情况，应考虑将其应用于血站筛检工作中[5]。
综上所述，输血风险残余度控制水平的高低在于是否挑选到具有较高灵敏度及特异性的检测方式，PCR检测技术在这方面具有理想的使用价值，在临床实际操作中相关工作者应该契合科学技术发展步伐，积极提高这种检测方式的应用频率。
参考文献
[1] 曲宏晶，沈奇荣，钟传村.降低临床输血风险和输血误差的应对措施[J].现代预防医学.2008.32（25）.284-285
[2] 武峰.输血面临的风险与安全输血的对策[J].中国热带医学.2007.19（15）.861-862
[3] 张朝云，俞丽丹，吴华平.血浆输注前常规次侧配血以提高输血安全的实践[J].中国输血杂志.2011.32（03）.715-716
[4] 秦欣，张三明.临床输血风险分析与预防措施[J].当代医学.2010.29（13）.438-439
[5] 陈映.2005年至2009年我院临床输血统计分析[J].内蒙古中医药.2010.31（11）.379-380