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摘要： 贵州短翅豆芫菁是贵州地区特有的药用昆虫，体内含有斑蝥素，但成虫体内不同部位斑蝥素含量不同。采取索氏提取法提取短翅豆芫菁不同部位的斑蝥素，用气相色谱仪定量测定。结果表明：（1）成虫不同部位所需提取时间不同：头部、四肢、翅膀需要12 h提取，胸部需要20 h提取，腹部需要40 h进行提取。（2）成虫的腹部斑蝥素含量最多，其次是胸部，再次之为头部、四肢和翅膀。（3）自然死亡的成虫体内总斑蝥素的百分含量比活体成虫体内的高。
关键词： 短翅豆芫菁；斑蝥素；含量；不同部位；提取时间
中图分类号： R282.74 文献标志码： A 文章编号：1002-1302（2016）03-0310-02
贵州短翅豆芫菁[1-2]是贵州地区独有一种斑蝥类药用昆虫[3-4]，也是中国特有的19种斑蝥类昆虫之一。贵州短翅豆芫菁体内所含斑蝥素[5]，是芫菁科昆虫特有的一种单萜类防御攻击物质，治疗肝癌，疗效显著，从而引起医药界的密切关注。斑蝥素的化学立体构型属于外型，1，2-顺-二甲基-3，6-氧桥六氢化邻苯二甲酸酐，是白色的片状结晶物质，是斑蝥酸的内酐。近年来，对斑蝥素的研究主要集中在生物合成[6-7]、功能、毒性[8]、生理、抗癌机制[9]、药理学[10]和应用[11]，而对斑蝥素在成虫虫体不同部位的分布研究较少。本研究通过对贵州短翅豆芫菁成虫不同部位斑蝥素含量的测定[12-14]，确定斑蝥素在短翅豆芫菁体内的分布情况，为进一步认识短翅豆芫菁提供了理论依据。
1 材料与方法
1.1 测定仪器与试剂
（1）日本岛津GC-14C气相色谱仪。色谱条件：色谱柱是OV-17填充柱[苯基（50%）甲基硅氧烷，最高使用温度340 ℃，担体80～100目]；氢气压力60 kPa；空气压力40 kPa；仪器灵敏度为1；载气为高纯氮气；检测器（FID）温度为230 ℃；色谱柱温度为165 ℃；进样口温度为230 ℃；进样量 2 μL。（2）质谱仪为岛津GC-MS2010。1701柱，进样口温度250 ℃，离子源温度250 ℃，进样量0.5 μL，氮气流速20 mL/min，分流比20 ∶ 1。（3）核磁共振仪INVOA-400。共振频率：（OBSERVE）H-1，399.9 MHz；溶剂：CDCl3（氘代三氯甲烷 ）。测试条件：弛豫时间5.0 s，脉冲角45.0度，采样时间5.122 s，谱宽3 679.9 Hz，累加次数32次。（4）分析天平（上海精科分析仪器厂）。（5）分析纯三氯甲烷，分析纯丙酮，分析纯盐酸；氘代三氯甲烷，氮气。（6）斑蝥素标准品，由北京中国生物制品检定所提供。（7）短翅豆芫菁成虫采自贵州省贵阳市花溪区及惠水地区，采后在贵州师范大学自然科学应用研究所内饲养。
1.2 短翅豆芫菁来源与鉴定
成虫采自贵州省贵阳、惠水等地区，经贵阳医学院昆虫学专家陈汉彬教授鉴定，鉴别结果为短翅豆芫菁，隶属鞘翅目芫菁科。
1.3 斑蝥素的定性鉴定
纯品制备：取自然风干的短翅豆芫菁成虫用丙酮、三氯甲烷 （体积比为1 ∶ 10）及少量浓盐酸的混合溶液（pH值在 0.5～1.0）于索氏提取器上沸腾回流12 h，滤去残渣，将溶液浓缩近干，用石油醚和无水乙醇洗涤重结晶法制得白色片状结晶物质。用质谱及核磁共振谱仪进行定性分析。
1.4 成虫体内不同部位斑蝥素的提取方法
取200只短翅豆芫菁活体，按头、胸、腹、四肢、翅膀等不同身体部位用100 mL丙酮、三氯甲烷及少量浓盐酸的混合溶液（pH值在0.5～1.0）于索氏提取器上沸腾回流提取。过滤，洗涤，将滤液定容至100 mL。
2 结果与讨论
2.1 斑蝥素的定性分析
2.1.1 质谱 用离子源直接进样分析斑蝥素，质谱分析数据如下：128（100），110（10. 42），96（67.13），70（38.89）（图1），与谱库中斑蝥素标准图谱相符。
2.1.2 核磁共振谱（H1NMR） 核磁共振图谱是：1 237（s，6H，CH3×2）；4 717（m，2H，CHOHC）；1 730～1 811（d，4H，CH2×2），与谱库中斑蝥素标准图谱相符（图2、图3）[15]。由提取物的质谱及核磁共振谱可知，此提取物就是斑蝥素，即短翅豆芫菁体内亦可分泌有效成分斑蝥素。
2.2 气相色谱分析
由斑蝥素提取物的气相色谱谱图可知，保留时间tR=10.015 min，与斑蝥素标准品气相色谱谱图上的保留时间 tR=10.019 min相符（图4、图5）。
2.3 成虫体内不同部位提取时间比较
由表1、图6知，对头部、四肢、翅膀的提取，12 h后斑蝥素的含量已经趋于恒定，无需延長提取时间；胸部的提取需要20 h，腹部的提取需要40 h。以下提取试验均按照头部、四肢、翅膀12 h提取，胸部20 h提取，腹部40 h提取。
2.4 成虫体内不同部位斑蝥素含量的比较
2.4.1 活体成虫各部位斑蝥素含量的比较 由表2得出，活体成虫中腹部斑蝥素的含量最高，其次是胸部，最少的是翅膀。提取得到短翅豆芫菁体内斑蝥素的总质量为 279 975 μg，占虫体质量为1.15%。
2.4.2 自然死亡的成虫各部位斑蝥素含量的比较 由表3得出，自然死亡的成虫中腹部斑蝥素的含量最高，其次是胸部，最少的是翅膀。提取得到短翅豆芫菁体内斑蝥素的总质量为179 446 μg，占虫体质量为2.70%。
3 结论
（1）贵州短翅豆芫菁体内含有斑蝥素。中国药典以南方大斑蝥（大斑蝥）Mylabris phalerata Pall和黄黑小斑蝥（小斑蝥）Mylabris cichorii 入药。随着人们对斑蝥素需求的增长，对 上述2种芫菁昆虫野生资源的过量采集，将导致其种群数量急剧减少，生态平衡遭到破坏。从贵州短翅豆芫菁体内提取斑蝥素，可以缓解药用斑蝥素紧张的市场需求，造福人类健康。（2）提取过程中，不同的部位所需提取时间不同：头部、四肢、翅膀需要12 h提取，胸部需要20 h提取，腹部需要40 h进行提取。短翅豆芫菁的腹部斑蝥素含量最多，其次是胸部，再次之为头部、四肢和翅膀。（3）试验室喂养过程中死去的虫子身体各部位总斑蝥素含量（2.70%）比活体身体各部位总斑蝥素含量（1.15%）高，主要是因为提取之前虫体已经风干。
致谢：贵阳医学院昆虫学专家陈汉彬教授进行了昆虫种类鉴定，特致谢忱。
参考文献：
[1]封孝兰，胡周强，梁正杰. 短翅豆芫菁生长发育的温度效应观测[J]. 应用昆虫学报，2013，50（2）：483-487.
[2]胡周强，肖杰易，韦会平. 短翅豆芫菁生物学特性研究[J]. 昆虫知识，2000，37（5）：287-289.
[3]李晓飞，陈祥盛，侯晓晖. 贵州产斑蝥素芫菁科、蜡蝉科昆虫名录与种类鉴定[J]. 山地农业生物学报，2008，27（1）：79-82.
[4]郭建军，檀 军，杨佳琪，等. 贵州省药用昆虫资源开发利用的现状与对策[J]. 贵州农业科学，2013，41（2）：100-103.
[5]魏方超，杜 娟，未宁宁，等. 斑蝥素及其衍生物的研究现状与应用[J]. 现代生物医学进展，2012，12（8）：1586-1589.
[6]殷幼平，靳贵晓. 芫菁体内斑蝥素的合成、转移和生物学功能[J]. 昆虫学报，2010，53（11）：1305-1313.
[7]王雪梅，陈祥盛，李晓飞. 芫菁科昆虫的生物学特性及人工养殖研究概况[J]. 贵州农业科学，2007，35（2）：140-143.
[8]李晓飞，陈祥盛，侯晓晖. 斑蝥素对6种害虫的毒杀作用[J]. 贵州农业科学，2008，36（3）：65-66.
[9]娄田田，杜 娟，陈祥盛，等. 斑蝥素及衍生物抗肿瘤机制的研究进展[J]. 亚太传统医药，2012，8（10）：205-207.
[10]于 婷，刘东武，陈志伟. 斑蝥素及其衍生物的作用机制及临床应用[J]. 生命科学仪器，2009，8（2）：15-18.
[11]李晓飞，陈祥盛，国兴明. 昆虫斑蝥素的研究与利用[J]. 山地农业生物学报，2004，23（2）：169-175.
[12]胡朝阳. 斑蝥素含量测定方法研究进展[J]. 廣州化工，2011，39（10）：49-51.
[13]李晓飞，陈祥盛，王雪梅. 贵州含斑蝥素昆虫资源调查及斑蝥素含量的测定[J]. 湖北农业科学，2007，46（2）：300-302.
[14]李晓飞，陈祥盛，国兴明. 芫菁科昆虫体内斑蝥素的气相色谱法测定[J]. 昆虫知识，2007，44（3）：459-462.
[15]冯钦忠，周建威. 关于斑蝥素1H NMR和UV测定结果的商榷[J]. 波谱学杂志，2010，27（1）：121-125.
关键词： 短翅豆芫菁；斑蝥素；含量；不同部位；提取时间
中图分类号： R282.74 文献标志码： A 文章编号：1002-1302（2016）03-0310-02
贵州短翅豆芫菁[1-2]是贵州地区独有一种斑蝥类药用昆虫[3-4]，也是中国特有的19种斑蝥类昆虫之一。贵州短翅豆芫菁体内所含斑蝥素[5]，是芫菁科昆虫特有的一种单萜类防御攻击物质，治疗肝癌，疗效显著，从而引起医药界的密切关注。斑蝥素的化学立体构型属于外型，1，2-顺-二甲基-3，6-氧桥六氢化邻苯二甲酸酐，是白色的片状结晶物质，是斑蝥酸的内酐。近年来，对斑蝥素的研究主要集中在生物合成[6-7]、功能、毒性[8]、生理、抗癌机制[9]、药理学[10]和应用[11]，而对斑蝥素在成虫虫体不同部位的分布研究较少。本研究通过对贵州短翅豆芫菁成虫不同部位斑蝥素含量的测定[12-14]，确定斑蝥素在短翅豆芫菁体内的分布情况，为进一步认识短翅豆芫菁提供了理论依据。
1 材料与方法
1.1 测定仪器与试剂
（1）日本岛津GC-14C气相色谱仪。色谱条件：色谱柱是OV-17填充柱[苯基（50%）甲基硅氧烷，最高使用温度340 ℃，担体80～100目]；氢气压力60 kPa；空气压力40 kPa；仪器灵敏度为1；载气为高纯氮气；检测器（FID）温度为230 ℃；色谱柱温度为165 ℃；进样口温度为230 ℃；进样量 2 μL。（2）质谱仪为岛津GC-MS2010。1701柱，进样口温度250 ℃，离子源温度250 ℃，进样量0.5 μL，氮气流速20 mL/min，分流比20 ∶ 1。（3）核磁共振仪INVOA-400。共振频率：（OBSERVE）H-1，399.9 MHz；溶剂：CDCl3（氘代三氯甲烷 ）。测试条件：弛豫时间5.0 s，脉冲角45.0度，采样时间5.122 s，谱宽3 679.9 Hz，累加次数32次。（4）分析天平（上海精科分析仪器厂）。（5）分析纯三氯甲烷，分析纯丙酮，分析纯盐酸；氘代三氯甲烷，氮气。（6）斑蝥素标准品，由北京中国生物制品检定所提供。（7）短翅豆芫菁成虫采自贵州省贵阳市花溪区及惠水地区，采后在贵州师范大学自然科学应用研究所内饲养。
1.2 短翅豆芫菁来源与鉴定
成虫采自贵州省贵阳、惠水等地区，经贵阳医学院昆虫学专家陈汉彬教授鉴定，鉴别结果为短翅豆芫菁，隶属鞘翅目芫菁科。
1.3 斑蝥素的定性鉴定
纯品制备：取自然风干的短翅豆芫菁成虫用丙酮、三氯甲烷 （体积比为1 ∶ 10）及少量浓盐酸的混合溶液（pH值在 0.5～1.0）于索氏提取器上沸腾回流12 h，滤去残渣，将溶液浓缩近干，用石油醚和无水乙醇洗涤重结晶法制得白色片状结晶物质。用质谱及核磁共振谱仪进行定性分析。
1.4 成虫体内不同部位斑蝥素的提取方法
取200只短翅豆芫菁活体，按头、胸、腹、四肢、翅膀等不同身体部位用100 mL丙酮、三氯甲烷及少量浓盐酸的混合溶液（pH值在0.5～1.0）于索氏提取器上沸腾回流提取。过滤，洗涤，将滤液定容至100 mL。
2 结果与讨论
2.1 斑蝥素的定性分析
2.1.1 质谱 用离子源直接进样分析斑蝥素，质谱分析数据如下：128（100），110（10. 42），96（67.13），70（38.89）（图1），与谱库中斑蝥素标准图谱相符。
2.1.2 核磁共振谱（H1NMR） 核磁共振图谱是：1 237（s，6H，CH3×2）；4 717（m，2H，CHOHC）；1 730～1 811（d，4H，CH2×2），与谱库中斑蝥素标准图谱相符（图2、图3）[15]。由提取物的质谱及核磁共振谱可知，此提取物就是斑蝥素，即短翅豆芫菁体内亦可分泌有效成分斑蝥素。
2.2 气相色谱分析
由斑蝥素提取物的气相色谱谱图可知，保留时间tR=10.015 min，与斑蝥素标准品气相色谱谱图上的保留时间 tR=10.019 min相符（图4、图5）。
2.3 成虫体内不同部位提取时间比较
由表1、图6知，对头部、四肢、翅膀的提取，12 h后斑蝥素的含量已经趋于恒定，无需延長提取时间；胸部的提取需要20 h，腹部的提取需要40 h。以下提取试验均按照头部、四肢、翅膀12 h提取，胸部20 h提取，腹部40 h提取。
2.4 成虫体内不同部位斑蝥素含量的比较
2.4.1 活体成虫各部位斑蝥素含量的比较 由表2得出，活体成虫中腹部斑蝥素的含量最高，其次是胸部，最少的是翅膀。提取得到短翅豆芫菁体内斑蝥素的总质量为 279 975 μg，占虫体质量为1.15%。
2.4.2 自然死亡的成虫各部位斑蝥素含量的比较 由表3得出，自然死亡的成虫中腹部斑蝥素的含量最高，其次是胸部，最少的是翅膀。提取得到短翅豆芫菁体内斑蝥素的总质量为179 446 μg，占虫体质量为2.70%。
3 结论
（1）贵州短翅豆芫菁体内含有斑蝥素。中国药典以南方大斑蝥（大斑蝥）Mylabris phalerata Pall和黄黑小斑蝥（小斑蝥）Mylabris cichorii 入药。随着人们对斑蝥素需求的增长，对 上述2种芫菁昆虫野生资源的过量采集，将导致其种群数量急剧减少，生态平衡遭到破坏。从贵州短翅豆芫菁体内提取斑蝥素，可以缓解药用斑蝥素紧张的市场需求，造福人类健康。（2）提取过程中，不同的部位所需提取时间不同：头部、四肢、翅膀需要12 h提取，胸部需要20 h提取，腹部需要40 h进行提取。短翅豆芫菁的腹部斑蝥素含量最多，其次是胸部，再次之为头部、四肢和翅膀。（3）试验室喂养过程中死去的虫子身体各部位总斑蝥素含量（2.70%）比活体身体各部位总斑蝥素含量（1.15%）高，主要是因为提取之前虫体已经风干。
致谢：贵阳医学院昆虫学专家陈汉彬教授进行了昆虫种类鉴定，特致谢忱。
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[6]殷幼平，靳贵晓. 芫菁体内斑蝥素的合成、转移和生物学功能[J]. 昆虫学报，2010，53（11）：1305-1313.
[7]王雪梅，陈祥盛，李晓飞. 芫菁科昆虫的生物学特性及人工养殖研究概况[J]. 贵州农业科学，2007，35（2）：140-143.
[8]李晓飞，陈祥盛，侯晓晖. 斑蝥素对6种害虫的毒杀作用[J]. 贵州农业科学，2008，36（3）：65-66.
[9]娄田田，杜 娟，陈祥盛，等. 斑蝥素及衍生物抗肿瘤机制的研究进展[J]. 亚太传统医药，2012，8（10）：205-207.
[10]于 婷，刘东武，陈志伟. 斑蝥素及其衍生物的作用机制及临床应用[J]. 生命科学仪器，2009，8（2）：15-18.
[11]李晓飞，陈祥盛，国兴明. 昆虫斑蝥素的研究与利用[J]. 山地农业生物学报，2004，23（2）：169-175.
[12]胡朝阳. 斑蝥素含量测定方法研究进展[J]. 廣州化工，2011，39（10）：49-51.
[13]李晓飞，陈祥盛，王雪梅. 贵州含斑蝥素昆虫资源调查及斑蝥素含量的测定[J]. 湖北农业科学，2007，46（2）：300-302.
[14]李晓飞，陈祥盛，国兴明. 芫菁科昆虫体内斑蝥素的气相色谱法测定[J]. 昆虫知识，2007，44（3）：459-462.
[15]冯钦忠，周建威. 关于斑蝥素1H NMR和UV测定结果的商榷[J]. 波谱学杂志，2010，27（1）：121-125.