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摘 要：在养猪生产中，为实现母猪在预期时间内分娩而广泛使用前列腺素诱导分娩。不同的给药方式，前列腺素诱导分娩的效果有所差异。前列腺素还具有促进母猪子宫修复的功能，这可以降低子宫内膜炎的发生率，提高母猪的泌乳能力。天然前列腺素及其化学合成类类似物在作用特性上稍有差别，猪场应在综合考虑后选择合适的产品。
关键词：母猪;前列腺素;PGF2α
中图分类号：S841.8 文献标志码：C 文章编号：1001-0769（2021）05-0043-02
前列腺素最早发现于1930年，科学家首次从人和动物的精液中发现了一种能引起平滑肌强烈收缩的物质，当时认为这一物质来源于前列腺，故命名为前列腺素（prostaglandin，PG）。1960年，研究人员从处于黄体期末期的后备母猪子宫冲洗液中收集到一种能够在体外溶解黄体的物质，后被证明是由子宫内膜分泌的PGF2α，因此子宫被认为是前列腺素的重要来源。目前，前列腺素已被证实的功能主要为调控黄体功能，促进子宫收缩、卵巢排卵及影响受精卵附着。前列腺素被视为调控母猪繁殖的重要工具之一[1]。
在母猪情期调控上，前列腺素的主要作用是引起黄体溶解，使机体的孕酮水平剧烈下降而启动发情。与母牛不同，母猪的黄体在生成后的12 d内无法被前列腺素溶解，因此在不确定母猪黄体时期的前提下，难以利用单针注射前列腺素的方式溶解黄体，这也是母猪的同步发情无法像母牛那样用前列腺素就可以实现的原因，母猪的同步发情需要通过口服烯丙孕素（孕酮类似物）来实现。同理，有些猪场给母猪注射前列腺素后，再注射促卵泡激素（follicle-stimulating gormone，FSH）以促进母猪快速发情，此方法的意义也值得商榷。基于PGF2α具有溶解黄体的功能，在当前的养猪生产中，前列腺素的主要用途是诱导妊娠母猪分娩，便于养猪生产者进行全进全出制管理，或者更容易进行产房寄养工作（若条件允许）。众所周知，母猪的妊娠维持依赖于黄体持续分泌孕酮，在注射前列腺素或其类似物后，黄体开始溶解，妊娠母豬体内的孕酮水平下降，妊娠进程中止，处于正常预产期的妊娠母猪通常会在注射前列腺素后36 h内启动分娩。研究发现，肌内注射前列腺素或其类似物，可以诱导大部分处于孕期第112～114天的妊娠母猪在36 h内分娩。剂量减半的外阴单次注射方式可以取得类似的效果，但更节约成本，可能的原因是母猪生殖道的淋巴与静脉血管紧密相连，外阴注射方式无肺首过效应，局部PGF2α浓度可以达到很高水平[2]（表1）。
剂量减半的PGF2α阴户双次注射比其单次注射可以让母猪的分娩时间更为集中[3]（表2）。集中分娩有利于产房管理及断奶操作，并能降低因母源抗体水平差异过大而影响断奶仔猪的疫苗接种效果，有利于后续阶段的保育仔猪的健康管理。
目前，被养猪生产者忽视的另一个重要功能是前列腺素有助于母猪产后子宫修复和预防产后子宫炎-乳腺炎-无乳（metritis-mastitis-agalactia，MMA）综合征。对于某些猪群中的母猪，由于产后黄体溶解不完全，体内的孕酮居于较高的水平，导致其发生泌乳障碍，给此类母猪注射前列腺素有助于解决此类问题。部分研究人员利用前列腺素能促进平滑肌收缩的功能在母猪分娩后给其注射以帮助子宫修复，提高产后子宫排出异物的能力，降低子宫内膜炎的发生率。子宫内膜炎发生率的降低也可以帮助母猪充分发挥泌乳能力，并提高仔猪的断奶体重。另外，也有研究表明，母猪产后子宫内膜的再生同样需要前列腺素的帮助[4]。因此，不局限于高胎次母猪，任何胎次的母猪在产后注射一针前列腺素，均可使生产管理者获得显著的经济效益。这对于那些提前断奶的母猪未必不是一个有益的尝试。
目前，市场上销售的前列腺素类产品主要分为两种：一种是人工合成的，但其化学结构与母猪子宫分泌的天然前列腺素相同，统称为前列腺素，如法国诗华动物保健公司生产的艾普欣?等;另一种是人工合成的化学类类似物——氯前列烯醇钠，目前市场上销售的此类产品既有进口的也有国产的。氯前列烯醇钠能提高药物与动物前列腺素受体的亲和力，并延长药物的半衰期，但是能否增加溶黄体能力目前有待商榷[5]。猪场一线使用者应在综合比较成本、功效和对母猪的应激作用等因素后选择性使用。
参考文献
[1] 朱士恩. 家畜繁殖学（第五版）[M]. 北京：中国农业出版社，2015.
[2] RENSIS D F， SALERI R， TUMMARUK P， et al. Prostaglandin F2α and control of reproduction in female swine： a review[J]. Theriogenology， 2012， 77（1）： 1-11.
[3] KIRKWOOD R N. Pharmacological intervention in swine reproduction[J]. Swine Health Prod， 1999， 7（1）： 29–35.
[4] GERJETS I， KEMPER N. Coliform mastitis in sows： a review[J]. J Swine Health Prod， 2009， 17（2）： 97–105.
[5] KIRKWOOD R N. Influence of postpartum cloprostenol injection on sow and litter performance[J]. Journal of Swine Health and Production， 1999， 7（3）： 121–122.
关键词：母猪;前列腺素;PGF2α
中图分类号：S841.8 文献标志码：C 文章编号：1001-0769（2021）05-0043-02
前列腺素最早发现于1930年，科学家首次从人和动物的精液中发现了一种能引起平滑肌强烈收缩的物质，当时认为这一物质来源于前列腺，故命名为前列腺素（prostaglandin，PG）。1960年，研究人员从处于黄体期末期的后备母猪子宫冲洗液中收集到一种能够在体外溶解黄体的物质，后被证明是由子宫内膜分泌的PGF2α，因此子宫被认为是前列腺素的重要来源。目前，前列腺素已被证实的功能主要为调控黄体功能，促进子宫收缩、卵巢排卵及影响受精卵附着。前列腺素被视为调控母猪繁殖的重要工具之一[1]。
在母猪情期调控上，前列腺素的主要作用是引起黄体溶解，使机体的孕酮水平剧烈下降而启动发情。与母牛不同，母猪的黄体在生成后的12 d内无法被前列腺素溶解，因此在不确定母猪黄体时期的前提下，难以利用单针注射前列腺素的方式溶解黄体，这也是母猪的同步发情无法像母牛那样用前列腺素就可以实现的原因，母猪的同步发情需要通过口服烯丙孕素（孕酮类似物）来实现。同理，有些猪场给母猪注射前列腺素后，再注射促卵泡激素（follicle-stimulating gormone，FSH）以促进母猪快速发情，此方法的意义也值得商榷。基于PGF2α具有溶解黄体的功能，在当前的养猪生产中，前列腺素的主要用途是诱导妊娠母猪分娩，便于养猪生产者进行全进全出制管理，或者更容易进行产房寄养工作（若条件允许）。众所周知，母猪的妊娠维持依赖于黄体持续分泌孕酮，在注射前列腺素或其类似物后，黄体开始溶解，妊娠母豬体内的孕酮水平下降，妊娠进程中止，处于正常预产期的妊娠母猪通常会在注射前列腺素后36 h内启动分娩。研究发现，肌内注射前列腺素或其类似物，可以诱导大部分处于孕期第112～114天的妊娠母猪在36 h内分娩。剂量减半的外阴单次注射方式可以取得类似的效果，但更节约成本，可能的原因是母猪生殖道的淋巴与静脉血管紧密相连，外阴注射方式无肺首过效应，局部PGF2α浓度可以达到很高水平[2]（表1）。
剂量减半的PGF2α阴户双次注射比其单次注射可以让母猪的分娩时间更为集中[3]（表2）。集中分娩有利于产房管理及断奶操作，并能降低因母源抗体水平差异过大而影响断奶仔猪的疫苗接种效果，有利于后续阶段的保育仔猪的健康管理。
目前，被养猪生产者忽视的另一个重要功能是前列腺素有助于母猪产后子宫修复和预防产后子宫炎-乳腺炎-无乳（metritis-mastitis-agalactia，MMA）综合征。对于某些猪群中的母猪，由于产后黄体溶解不完全，体内的孕酮居于较高的水平，导致其发生泌乳障碍，给此类母猪注射前列腺素有助于解决此类问题。部分研究人员利用前列腺素能促进平滑肌收缩的功能在母猪分娩后给其注射以帮助子宫修复，提高产后子宫排出异物的能力，降低子宫内膜炎的发生率。子宫内膜炎发生率的降低也可以帮助母猪充分发挥泌乳能力，并提高仔猪的断奶体重。另外，也有研究表明，母猪产后子宫内膜的再生同样需要前列腺素的帮助[4]。因此，不局限于高胎次母猪，任何胎次的母猪在产后注射一针前列腺素，均可使生产管理者获得显著的经济效益。这对于那些提前断奶的母猪未必不是一个有益的尝试。
目前，市场上销售的前列腺素类产品主要分为两种：一种是人工合成的，但其化学结构与母猪子宫分泌的天然前列腺素相同，统称为前列腺素，如法国诗华动物保健公司生产的艾普欣?等;另一种是人工合成的化学类类似物——氯前列烯醇钠，目前市场上销售的此类产品既有进口的也有国产的。氯前列烯醇钠能提高药物与动物前列腺素受体的亲和力，并延长药物的半衰期，但是能否增加溶黄体能力目前有待商榷[5]。猪场一线使用者应在综合比较成本、功效和对母猪的应激作用等因素后选择性使用。
参考文献
[1] 朱士恩. 家畜繁殖学（第五版）[M]. 北京：中国农业出版社，2015.
[2] RENSIS D F， SALERI R， TUMMARUK P， et al. Prostaglandin F2α and control of reproduction in female swine： a review[J]. Theriogenology， 2012， 77（1）： 1-11.
[3] KIRKWOOD R N. Pharmacological intervention in swine reproduction[J]. Swine Health Prod， 1999， 7（1）： 29–35.
[4] GERJETS I， KEMPER N. Coliform mastitis in sows： a review[J]. J Swine Health Prod， 2009， 17（2）： 97–105.
[5] KIRKWOOD R N. Influence of postpartum cloprostenol injection on sow and litter performance[J]. Journal of Swine Health and Production， 1999， 7（3）： 121–122.