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摘要 针对莲雾生产上容易产生裂果、落果及果实品质差等问题，通过对莲雾植株喷施一定浓度的过氧化氢，研究喷施不同浓度过氧化氢对莲雾生长和果实品质的影响。结果表明：低浓度过氧化氢有保果的作用，高浓度则会促进落果，20 mmol/L的过氧化氢处理能减少莲雾果实落果率，提高莲雾果实和叶片的干物质含量、单果鲜重、果实可溶性固形物含量、果实的可溶性蛋白含量。
关键词 过氧化氢；莲雾；果实生长；影响
中图分类号 S667.9 文献标识码 A 文章编号 1007-5739（2015）13-0094-01
莲雾是桃金娘科蒲桃属热带亚热带果树，其生长速度快，周年常绿，果形奇特，且不同品种的莲雾多彩多姿，具有较好的观赏价值和经济价值[1-2]。目前对莲雾高产栽培技术已有较多的研究[3-6]，并且取得了较好的结果。海南莲雾的种植面积已达1 333 hm2以上，但在莲雾生产上容易产生裂果、落果及果实品质差等问题[7]，严重制约着海南莲雾的发展。因此，在栽培技术上亟需更新传统手段，以达到减少裂果、落果，提高莲雾果实品质的目的。本研究针对以上这些问题，通过对莲雾植株喷施一定浓度的过氧化氢（H2O2），研究其对莲雾叶片干物质含量、落果率、果实可溶性固形物含量、果实可溶性蛋白含量等的影响，以期得到有利于莲雾生长的最佳H2O2浓度，为提高莲雾果实产量和品质提供参考。
1 材料与方法
1.1 试验概况
试验于2013—2014年在海南省三亚市崖州区三亚南鹿实业有限公司莲雾基地进行，该基地土壤为沙土，土壤肥料中等。供试莲雾品种为黑金刚，树龄7年。供试过氧化氢浓度为30%。
1.2 试验设计
试验共设5个H2O2浓度处理，分别为10、20、40、60 mmol/L，以清水作对照（CK）。每个处理选1株树设为1个小区，3次重复，共15个小区。处理方法：喷雾器喷施。处理时间：各处理均于开花后7 d开始进行，之后每7 d喷施1次，共喷4次。
1.3 调查内容与方法
在幼果期每个处理选取100个果实标记，果实成熟时调查各处理的落果情况。每个小区在采收期随机取5个成熟果实和5片功能叶，在分别测量鲜重之后，用烘箱烘干，测定其干物质含量。在果实采收期测定的其他指标包括叶片SPAD值、单果重量、果实可溶性固形物含量、可溶性蛋白含量。质量测定选用梅特勒托利多AL104电子天平，SPAD值测定用SPAD-502Plus叶绿素仪，可溶性固形物测定用日本ATAGO手持折射仪MASTER-α，可溶性蛋白测定用考马斯亮蓝比色法[8]。
试验数据均采用Excel 2003软件处理并作图，方差分析通过SPSS 17.0软件处理，采用邓肯新复极差法进行差异显著性检验。
2 结果与分析
2.1 落果情况
不同浓度的H2O2对莲雾落果性的影响不同，低浓度H2O2有保果的作用，高浓度则会促进落果，并且在本试验的不同处理中，10 mmol/L H2O2处理起到保果效果，采收期落果率比CK降低5%，20 mmol/L H2O2处理后在采收期时落果率与CK相当，60 mmol/L H2O2处理后在采收期时落果率达69.0%（图1）。
2.2 叶片干物质与叶绿素含量
从表1可以看出，H2O2处理可显著提高莲雾叶片干物质含量和叶绿素含量，20 mmol/L H2O2处理表现出最高的叶片干物质和SPAD值，但10、40、60 mmol/L H2O2处理之间叶片SPAD值无显著差异。
2.3 果实性状
对不同浓度H2O2处理下莲雾果实性状进行研究表明（表1），经过H2O2处理后显著增加了果实鲜重和果实干物质含量，但随着H2O2浓度的增大，对果实鲜重的增加效果减弱，以10 mmol/L H2O2处理果实鲜重最高，而不同浓度H2O2处理果实干物质含量高低为20 mmol/L>40 mmol/L>10 mmol/L>60 mmol/L。
H2O2处理提高了果实可溶性蛋白和可溶性固形物含量，20 mmol/L H2O2处理对提高果实可溶性蛋白含量和可溶性固形物含量效果最好，40 mmol/L和60 mmol/L H2O2处理间果实可溶性蛋白含量和可溶性固形物含量差异不显著。
3 结论与讨论
H2O2是活性氧的一种，长期以来，H2O2被认为是对植物细胞具有毒害作用的代谢产物，能引起植物体内大分子物质如脂类、蛋白质及 DNA 的损伤。然而近年来H2O2在植物细胞内的信号转导作用已经被许多试验证实[9]，适宜水平的H2O2能促进植物的正常生长和发育[10-11]。本研究将H2O2作为生长调节药剂，首次将其利用到莲雾植株上，通过研究不同浓度H2O2喷施效果，结果表明一定浓度的H2O2处理增加了叶片叶绿素含量，为光合作用的增加成为可能。干物质积累量为总光合作用量减去细胞呼吸量，莲雾果实鲜重和干物质积累量的增大，说明其总光合作用量增大或者其细胞呼吸量减少。因此，适宜浓度的H2O2对莲雾的生长起到有利作用。
H2O2在植物体中起到正向或是反向的作用，其浓度是关键，本研究也表明低浓度H2O2对莲雾果实有保果的作用，高浓度则会促进落果。测定植物体内可溶性蛋白质是研究酶活的一个重要项目，本研究中H2O2处理后，增加了莲雾果实的可溶性蛋白，可溶蛋白质含量的提高，会增加细胞渗透浓度和功能蛋白的数量，有助于维持细胞正常代谢，这些过程很可能是植物抵抗逆境的一种机制。
H2O2不仅在植株的生长过程中能起调控作用，而且对于果实的坐果、防止果实脱落、增加果实总数也起着重要作用。Souza等[12]用H2O2对西番莲进行处理，最终提高了西番莲的坐果率。Ozaki等[13]最近的研究结果表明，施用H2O2不仅能增加产量，而且还增加了甜瓜的甜度。本研究中，20 mmol/L的H2O2对莲雾起到了防落果的作用，同时也增加了莲雾的可溶性固形物含量。 4 参考文献
[1] 农业部南亚办.中国热带南亚热带果树[M].北京：中国农业出版社，1988.
[2] 杨光华，杨小锋，李劲松，等.莲雾种质资源分类研究进展[J].中国南方果树，2013，42（1）：40-42.
[3] 周红玲，郑加协，陈石.莲雾周年生产栽培技术[J].中国热带农业，2011（5）：92-94.
[4] 杨燕红，梁爱丽，覃伟远.莲雾丰产栽培技术[J].现代农业科技，2008（23）：54-55.
[5] 韩剑，罗仕争，李海明.海南莲雾的高产栽培技术[J].中国南方果树，2009，38（5）：40-42.
[6] 杨光华，杨小锋，龚家建，等.莲雾设施栽培技术[J].现代农业科技，2015（9）：100-101.
[7] 赖荣茂.莲雾田间冷害防治的研究[J].中国农业，2001，7（4）：17-22.
[8] 李合生，陈翠莲，红玉枝，等.植物生理生化试验原理和技术[M].北京：高等教育出版社，2002.
[9] MITTLER R.Oxidative stress，antioxidants and stress tolerance[J].Trends Plant Sci，2002，7（9）：405-410.
[10] CHENG Y，SONG C.Hydrogen peroxide homeostasis and signaling in plant cells[J].Sci China C Life Sci，2006，49：1-11
[11] PENG L T，JIANG Y M，YANG S Z，et al.Accelerated senescence of fresh-cut Chinese water chestnut tissues in to hydrogen peroxide accu-mulation[J].Plant Physiol Mol Biol，2005，31：527-532.
[12] SOUZA M M，PEREIRA T N，MARTINS E R.Flower receptivity and fruit charac-teristics associated to time of pollination in the yellow passion fruit Passifl ora edulis Sims f. fl avicarpa[J].Sci Hort，2004，101：373-385.
[13] OZAKI K A U，TOMOKO T，SHINAGAWAA F，et al.Enrichment of sugar content in melon fruits by hydrogen peroxide treatment[J].Plant Physiol，2009，166：569-578.
关键词 过氧化氢；莲雾；果实生长；影响
中图分类号 S667.9 文献标识码 A 文章编号 1007-5739（2015）13-0094-01
莲雾是桃金娘科蒲桃属热带亚热带果树，其生长速度快，周年常绿，果形奇特，且不同品种的莲雾多彩多姿，具有较好的观赏价值和经济价值[1-2]。目前对莲雾高产栽培技术已有较多的研究[3-6]，并且取得了较好的结果。海南莲雾的种植面积已达1 333 hm2以上，但在莲雾生产上容易产生裂果、落果及果实品质差等问题[7]，严重制约着海南莲雾的发展。因此，在栽培技术上亟需更新传统手段，以达到减少裂果、落果，提高莲雾果实品质的目的。本研究针对以上这些问题，通过对莲雾植株喷施一定浓度的过氧化氢（H2O2），研究其对莲雾叶片干物质含量、落果率、果实可溶性固形物含量、果实可溶性蛋白含量等的影响，以期得到有利于莲雾生长的最佳H2O2浓度，为提高莲雾果实产量和品质提供参考。
1 材料与方法
1.1 试验概况
试验于2013—2014年在海南省三亚市崖州区三亚南鹿实业有限公司莲雾基地进行，该基地土壤为沙土，土壤肥料中等。供试莲雾品种为黑金刚，树龄7年。供试过氧化氢浓度为30%。
1.2 试验设计
试验共设5个H2O2浓度处理，分别为10、20、40、60 mmol/L，以清水作对照（CK）。每个处理选1株树设为1个小区，3次重复，共15个小区。处理方法：喷雾器喷施。处理时间：各处理均于开花后7 d开始进行，之后每7 d喷施1次，共喷4次。
1.3 调查内容与方法
在幼果期每个处理选取100个果实标记，果实成熟时调查各处理的落果情况。每个小区在采收期随机取5个成熟果实和5片功能叶，在分别测量鲜重之后，用烘箱烘干，测定其干物质含量。在果实采收期测定的其他指标包括叶片SPAD值、单果重量、果实可溶性固形物含量、可溶性蛋白含量。质量测定选用梅特勒托利多AL104电子天平，SPAD值测定用SPAD-502Plus叶绿素仪，可溶性固形物测定用日本ATAGO手持折射仪MASTER-α，可溶性蛋白测定用考马斯亮蓝比色法[8]。
试验数据均采用Excel 2003软件处理并作图，方差分析通过SPSS 17.0软件处理，采用邓肯新复极差法进行差异显著性检验。
2 结果与分析
2.1 落果情况
不同浓度的H2O2对莲雾落果性的影响不同，低浓度H2O2有保果的作用，高浓度则会促进落果，并且在本试验的不同处理中，10 mmol/L H2O2处理起到保果效果，采收期落果率比CK降低5%，20 mmol/L H2O2处理后在采收期时落果率与CK相当，60 mmol/L H2O2处理后在采收期时落果率达69.0%（图1）。
2.2 叶片干物质与叶绿素含量
从表1可以看出，H2O2处理可显著提高莲雾叶片干物质含量和叶绿素含量，20 mmol/L H2O2处理表现出最高的叶片干物质和SPAD值，但10、40、60 mmol/L H2O2处理之间叶片SPAD值无显著差异。
2.3 果实性状
对不同浓度H2O2处理下莲雾果实性状进行研究表明（表1），经过H2O2处理后显著增加了果实鲜重和果实干物质含量，但随着H2O2浓度的增大，对果实鲜重的增加效果减弱，以10 mmol/L H2O2处理果实鲜重最高，而不同浓度H2O2处理果实干物质含量高低为20 mmol/L>40 mmol/L>10 mmol/L>60 mmol/L。
H2O2处理提高了果实可溶性蛋白和可溶性固形物含量，20 mmol/L H2O2处理对提高果实可溶性蛋白含量和可溶性固形物含量效果最好，40 mmol/L和60 mmol/L H2O2处理间果实可溶性蛋白含量和可溶性固形物含量差异不显著。
3 结论与讨论
H2O2是活性氧的一种，长期以来，H2O2被认为是对植物细胞具有毒害作用的代谢产物，能引起植物体内大分子物质如脂类、蛋白质及 DNA 的损伤。然而近年来H2O2在植物细胞内的信号转导作用已经被许多试验证实[9]，适宜水平的H2O2能促进植物的正常生长和发育[10-11]。本研究将H2O2作为生长调节药剂，首次将其利用到莲雾植株上，通过研究不同浓度H2O2喷施效果，结果表明一定浓度的H2O2处理增加了叶片叶绿素含量，为光合作用的增加成为可能。干物质积累量为总光合作用量减去细胞呼吸量，莲雾果实鲜重和干物质积累量的增大，说明其总光合作用量增大或者其细胞呼吸量减少。因此，适宜浓度的H2O2对莲雾的生长起到有利作用。
H2O2在植物体中起到正向或是反向的作用，其浓度是关键，本研究也表明低浓度H2O2对莲雾果实有保果的作用，高浓度则会促进落果。测定植物体内可溶性蛋白质是研究酶活的一个重要项目，本研究中H2O2处理后，增加了莲雾果实的可溶性蛋白，可溶蛋白质含量的提高，会增加细胞渗透浓度和功能蛋白的数量，有助于维持细胞正常代谢，这些过程很可能是植物抵抗逆境的一种机制。
H2O2不仅在植株的生长过程中能起调控作用，而且对于果实的坐果、防止果实脱落、增加果实总数也起着重要作用。Souza等[12]用H2O2对西番莲进行处理，最终提高了西番莲的坐果率。Ozaki等[13]最近的研究结果表明，施用H2O2不仅能增加产量，而且还增加了甜瓜的甜度。本研究中，20 mmol/L的H2O2对莲雾起到了防落果的作用，同时也增加了莲雾的可溶性固形物含量。 4 参考文献
[1] 农业部南亚办.中国热带南亚热带果树[M].北京：中国农业出版社，1988.
[2] 杨光华，杨小锋，李劲松，等.莲雾种质资源分类研究进展[J].中国南方果树，2013，42（1）：40-42.
[3] 周红玲，郑加协，陈石.莲雾周年生产栽培技术[J].中国热带农业，2011（5）：92-94.
[4] 杨燕红，梁爱丽，覃伟远.莲雾丰产栽培技术[J].现代农业科技，2008（23）：54-55.
[5] 韩剑，罗仕争，李海明.海南莲雾的高产栽培技术[J].中国南方果树，2009，38（5）：40-42.
[6] 杨光华，杨小锋，龚家建，等.莲雾设施栽培技术[J].现代农业科技，2015（9）：100-101.
[7] 赖荣茂.莲雾田间冷害防治的研究[J].中国农业，2001，7（4）：17-22.
[8] 李合生，陈翠莲，红玉枝，等.植物生理生化试验原理和技术[M].北京：高等教育出版社，2002.
[9] MITTLER R.Oxidative stress，antioxidants and stress tolerance[J].Trends Plant Sci，2002，7（9）：405-410.
[10] CHENG Y，SONG C.Hydrogen peroxide homeostasis and signaling in plant cells[J].Sci China C Life Sci，2006，49：1-11
[11] PENG L T，JIANG Y M，YANG S Z，et al.Accelerated senescence of fresh-cut Chinese water chestnut tissues in to hydrogen peroxide accu-mulation[J].Plant Physiol Mol Biol，2005，31：527-532.
[12] SOUZA M M，PEREIRA T N，MARTINS E R.Flower receptivity and fruit charac-teristics associated to time of pollination in the yellow passion fruit Passifl ora edulis Sims f. fl avicarpa[J].Sci Hort，2004，101：373-385.
[13] OZAKI K A U，TOMOKO T，SHINAGAWAA F，et al.Enrichment of sugar content in melon fruits by hydrogen peroxide treatment[J].Plant Physiol，2009，166：569-578.