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第一部分 声敏型脂质纳米粒的制备及性能检测
目的：制备一种载血卟啉单甲醚（ hematoporphyrin monomethyl ether, HMME）包裹全氟溴辛烷（1-Bromoheptadecafluorooctane, PFOB）及阿霉素（Doxorubicin, DOX）的声敏型脂质纳米粒。检测其一般理化特性，HMME和DOX的包封率以及体外释放药物的能力。
方法：采用薄膜水化法制备载HMME包裹PFOB及DOX的声敏型脂质纳米粒（soundsensitive nano-liposomes SNL）。检测其粒径、电位以及光吸收特性等理化性质；采用高效液相色谱法分别绘制HMME和DOX的标准曲线，计算出SNL中HMME和DOX各自的包封率；采用高效液相色谱法检测体外SNL在低功率聚焦超声（low intensity focus ultrosound，LIFU）作用下释放HMME和DOX的情况。
结果：所制备的SNL，粒径为（282.53±6.95）nm，电位为（-45.46 ±1.22）mV；透射电镜下观察，SNL成球形，电子不易穿过呈深黑色，给予LIFU作用后，电子较易穿过呈半透明；根据绘制的标准曲线，计算出HMME的包封率为（80.15±15.11）%、DOX的包封率为（46.47±4.82）%；经0.2w/cm2的LIFU处理，8h内SNL释放HMME达（45.54±3.48）%，DOX达（83.45±2.97）%，经0.4w/cm2的LIFU处理，8h内SNL释放HMME达（47.37±5.60）%，DOX达（79.42 ±4.36）%。
结论：成功制备出载HMME包裹PFOB及DOX的声敏型脂质纳米粒（SNL），其形态为球形，粒径大小均一，分布均匀，HMME及DOX的包封率较高，经LIFU处理，可有效地增强药物释放，并且在LIFU的强度提高时，释放药物的能力也有所加强。
第二部分 声敏型脂质纳米粒与LIFU作用产生声动力效果研究
目的：探究声敏型脂质纳米粒在LIFU作用下产生声动力的效果。
方法：以 DPBF（1,3-二苯基异苯并呋喃）为活性氧探针，采用荧光分光光度计检测不同HMME浓度的SNL与LIFU，以及SNL与不同强度的LIFU作用后剩余DPBF产生的荧光，与对照组比较间接反映产生活性氧的相对量。以DCFH-DA（2,7-二氯荧光黄双乙酸盐）为活性氧探针，采用激光共聚焦显微镜观察HepG2细胞在与SNL共孵育后，LIFU处理下产生的绿色荧光，间接反映产生活性氧的相对量，同时采用流式细胞技术仪检测产生的绿色荧光的强度。
结果：以DPBF为活性氧探针，产生活性氧的相对量随SNL中HMME浓度的增加或LIFU强度增高而增多；SNL与HepG2细胞后，以DCFH-DA为活性氧探针，激光共聚焦观察显示 SNL+LIFU（0.2W/cm2）组较 SNL组绿色荧光强，当LIFU为0.4W/cm2时，绿色荧光更强。
结论：SNL产生活性氧的能力跟声敏剂HMME的浓度呈正相关，同时，随着LIFU强度的提高而增多；当SNL与HepG2细胞共孵育后，产生活性氧的能力也与声敏剂HMME的浓度呈正相关，LIFU强度增加产生的活性氧也增加。
第三部分 声敏型脂质纳纳米粒CT成像及体外治疗的研究
目的：检测声敏型脂质纳米粒体外CT显像能力，评价其细胞毒性及声动力联合化疗的治疗效果。
方法：采用CT仪观察不同PFOB浓度（（386，193，96.5，48.25， 24.125，12.0625）mg/mL）的SNL的CT成像效果；采用CCK8法检测SNL 的细胞毒性，将不同分组的脂质纳米粒与 HepG2 细胞共孵育，6h后 LIFU 组、HNL+LIFU 组和 SNL+LIFU 组分别予以 LIFU（0.4W/cm2， 680kHz，脉冲2s，1min）处理，各组均与SNL共孵育24h，以单纯LIFU组为对照组，CCK8实验检测各组的细胞毒性，并计算IC50。
结果：CT仪能观察到SNL具有明显的CT成像效果，且CT值与SNL中 PFOB 的浓度呈正相关（P＜0.05）；CCK8 实验结果显示磷脂浓度在0.52083～200μg/mL之间，HepG2细胞的存活率均高于85%，差异无统计学意义（ F=0.719 ， P＞0.05 ）；LIFU 组 HepG2 细胞的存活率为（92.85±2.36）%；DNL组的细胞存活率DOX组的高（P＜0.05）；HNL+LIFU组的细胞存活率较 HNL 组低（P＜0.05）；SNL+LIFU 组的细胞存活率较HNL+LIFU组、DNL组和DOX组均低（P＜0.05）。
结论：制备的声敏型脂质纳米粒具有良好的生物安全性，具备 CT成像的能力及联合声动力治疗和化疗增强对 HepG2 细胞的杀伤作用，为体内实验奠定了基础。
目的：制备一种载血卟啉单甲醚（ hematoporphyrin monomethyl ether, HMME）包裹全氟溴辛烷（1-Bromoheptadecafluorooctane, PFOB）及阿霉素（Doxorubicin, DOX）的声敏型脂质纳米粒。检测其一般理化特性，HMME和DOX的包封率以及体外释放药物的能力。
方法：采用薄膜水化法制备载HMME包裹PFOB及DOX的声敏型脂质纳米粒（soundsensitive nano-liposomes SNL）。检测其粒径、电位以及光吸收特性等理化性质；采用高效液相色谱法分别绘制HMME和DOX的标准曲线，计算出SNL中HMME和DOX各自的包封率；采用高效液相色谱法检测体外SNL在低功率聚焦超声（low intensity focus ultrosound，LIFU）作用下释放HMME和DOX的情况。
结果：所制备的SNL，粒径为（282.53±6.95）nm，电位为（-45.46 ±1.22）mV；透射电镜下观察，SNL成球形，电子不易穿过呈深黑色，给予LIFU作用后，电子较易穿过呈半透明；根据绘制的标准曲线，计算出HMME的包封率为（80.15±15.11）%、DOX的包封率为（46.47±4.82）%；经0.2w/cm2的LIFU处理，8h内SNL释放HMME达（45.54±3.48）%，DOX达（83.45±2.97）%，经0.4w/cm2的LIFU处理，8h内SNL释放HMME达（47.37±5.60）%，DOX达（79.42 ±4.36）%。
结论：成功制备出载HMME包裹PFOB及DOX的声敏型脂质纳米粒（SNL），其形态为球形，粒径大小均一，分布均匀，HMME及DOX的包封率较高，经LIFU处理，可有效地增强药物释放，并且在LIFU的强度提高时，释放药物的能力也有所加强。
第二部分 声敏型脂质纳米粒与LIFU作用产生声动力效果研究
目的：探究声敏型脂质纳米粒在LIFU作用下产生声动力的效果。
方法：以 DPBF（1,3-二苯基异苯并呋喃）为活性氧探针，采用荧光分光光度计检测不同HMME浓度的SNL与LIFU，以及SNL与不同强度的LIFU作用后剩余DPBF产生的荧光，与对照组比较间接反映产生活性氧的相对量。以DCFH-DA（2,7-二氯荧光黄双乙酸盐）为活性氧探针，采用激光共聚焦显微镜观察HepG2细胞在与SNL共孵育后，LIFU处理下产生的绿色荧光，间接反映产生活性氧的相对量，同时采用流式细胞技术仪检测产生的绿色荧光的强度。
结果：以DPBF为活性氧探针，产生活性氧的相对量随SNL中HMME浓度的增加或LIFU强度增高而增多；SNL与HepG2细胞后，以DCFH-DA为活性氧探针，激光共聚焦观察显示 SNL+LIFU（0.2W/cm2）组较 SNL组绿色荧光强，当LIFU为0.4W/cm2时，绿色荧光更强。
结论：SNL产生活性氧的能力跟声敏剂HMME的浓度呈正相关，同时，随着LIFU强度的提高而增多；当SNL与HepG2细胞共孵育后，产生活性氧的能力也与声敏剂HMME的浓度呈正相关，LIFU强度增加产生的活性氧也增加。
第三部分 声敏型脂质纳纳米粒CT成像及体外治疗的研究
目的：检测声敏型脂质纳米粒体外CT显像能力，评价其细胞毒性及声动力联合化疗的治疗效果。
方法：采用CT仪观察不同PFOB浓度（（386，193，96.5，48.25， 24.125，12.0625）mg/mL）的SNL的CT成像效果；采用CCK8法检测SNL 的细胞毒性，将不同分组的脂质纳米粒与 HepG2 细胞共孵育，6h后 LIFU 组、HNL+LIFU 组和 SNL+LIFU 组分别予以 LIFU（0.4W/cm2， 680kHz，脉冲2s，1min）处理，各组均与SNL共孵育24h，以单纯LIFU组为对照组，CCK8实验检测各组的细胞毒性，并计算IC50。
结果：CT仪能观察到SNL具有明显的CT成像效果，且CT值与SNL中 PFOB 的浓度呈正相关（P＜0.05）；CCK8 实验结果显示磷脂浓度在0.52083～200μg/mL之间，HepG2细胞的存活率均高于85%，差异无统计学意义（ F=0.719 ， P＞0.05 ）；LIFU 组 HepG2 细胞的存活率为（92.85±2.36）%；DNL组的细胞存活率DOX组的高（P＜0.05）；HNL+LIFU组的细胞存活率较 HNL 组低（P＜0.05）；SNL+LIFU 组的细胞存活率较HNL+LIFU组、DNL组和DOX组均低（P＜0.05）。
结论：制备的声敏型脂质纳米粒具有良好的生物安全性，具备 CT成像的能力及联合声动力治疗和化疗增强对 HepG2 细胞的杀伤作用，为体内实验奠定了基础。