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饮食因素对癌症的抑制机制复杂。研究表明,循环肿瘤细胞(Criculating Tumor Cells,CTCs)在血液循环中的数量多少可反映癌症进展的程度,并可用于抗癌药物的治疗效果评价。因此评价饮食因素对CTCs的影响将有助于更全面地评价饮食因素的抑癌作用。论文介绍了一种基于功能化留置针的CTCs在体捕获方法,并用于小鼠肿瘤模型外周血中CTCs的捕获与检测,可在同一只动物的多个癌症进展时间点评价饮食因素对CTCs的影响,该方法灵敏度高,操作简单且成本低,可用于评价饮食因素对癌症转移的影响。本课题组在之前的工作中介绍了一种基于功能化留置针的CTCs在体捕获方法。本文将此方法用于小鼠肿瘤模型CTCs的捕获,对捕获的细胞采用免疫荧光染色鉴别并计数。第一章概述了CTCs检测方法和饮食因素抑癌作用研究进展,简单介绍了当前饮食因素抑癌作用的评价方法。重点综述了CTCs在体捕获方法及几种食品提取物抑癌作用的研究进展。第二章将基于功能化留置针的在体捕获方法用于捕获小鼠肿瘤模型CTCs,结合体外细胞免疫荧光染色方法,鉴定CTCs并计数。实验将留置针套管表面包被聚二甲基硅氧烷(polydimethylsiloxane,PDMS),PDMS可吸附抗上皮细胞粘附因子(EpCAM)抗体。上述功能化留置针能特异性捕获可在细胞表面表达EpCAM抗原的CTCs。将功能化留置针穿刺入实验小鼠的尾静脉,停留一段时间,可捕获流经静脉的CTCs。将特异性捕获的CTCs和非特异性吸附在针表面的白细胞洗脱后,经过固定、透膜、荧光标记抗体染色及细胞核染色等步骤完成细胞免疫荧光染色,在倒置荧光显微镜下观察,根据细胞是否有核和不同抗体的特异性染色来区分计数白细胞和CTCs。实验对比了基于功能化留置针的在体捕获方法和基于免疫磁球的体外捕获方法的检测效果。将不同数量的癌细胞接种小鼠,建立肿瘤模型,获得不同癌症进展程度的小鼠,检测不同癌症进展程度的小鼠肿瘤模型CTCs的数量。实验对洗脱剂及免疫荧光染色的细胞固着基底、透膜时间等进行了优化,选择磷酸盐缓冲液(Phosphate Buffered Saline,PBS)作为洗脱剂,酶标板作为固着基底,透膜时间25 min。在体及体外捕获方法分别于小鼠接种癌细胞后的第7天及第21天捕获到CTCs。实验结果表明,随着癌症的恶化,CTCs的捕获数量呈递增趋势。第三章介绍了不同的饮食因素对小鼠肿瘤模型CTCs数目变化的影响。实验采用姜黄素、原花青素、β-谷甾醇、紫苏醇和茶多酚等有明确抑癌效果的抗癌食品活性成分,灌胃小鼠肿瘤模型,抑制其癌症发展。考察了高糖饮食和高脂饮食等不良饮食模式对小鼠肿瘤模型CTCs数目的变化情况,并对其促癌作用进行了比较。结合不同小鼠肿瘤模型的CTCs捕获数目、原位癌体积和转移癌的发展情况,从癌症进展的三个主要阶段——原位癌、转移过程和转移瘤,全面评价了饮食因素的抑癌作用。实验结果表明,多种有抑癌作用的抗癌食品活性成分对原位癌体积、CTCs数量和转移瘤数量与发生率具有不同程度的抑制作用;不良饮食模式对癌症进展的各个阶段均有促进作用。