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目的: 观察大鼠骨髓源性内皮祖细胞(Endothelial Progenitor Cells,EPCs)对雪旺细胞(Sehwann Cells,SCs)增殖能力的影响,及黄芪多糖(Astragalus Polysaccharides,APS)对其干预的影响。 方法: (1)麻醉后处死Wistar大鼠,分离出股骨、胫骨、胸骨、肱骨,除去结缔组织,剪去骨骺端,从骨髓腔的一端将骨髓从另一端冲出。大鼠骨髓利用密度梯度离心技术分离出单个核细胞后进行诱导培养,观察并记录细胞形态变化,培养至第7d,收集贴壁细胞,备用。激光共聚焦显微鉴定细胞,对DiI-acLDL吞噬及FITC-UEA-1结合双阳性为EPCs,流式细胞仪进一步鉴定细胞。 (2)用不同浓度的APS(0.05mg/ml、0.1mg/ml、0.2mg/ml、0.4mg/ml、0.8mg/ml)干预培养EPCs24小时,检测EPCs数量和增殖情况。选用浓度为0.4mg/ml的APS干预培养EPCs不同时间(0h、6h、12h、24h、48h),检测EPCs数量和增殖情况。 (3)将购买的雪旺细胞株适应性培养并传代至生长对数期,收集SCs。用上述不同浓度的APS干预培养SCs24小时,MTT法检测SCs增殖情况。选用浓度为0.4mg/ml的APS干预培养SCs上述不同时间,检测SCs增殖情况。 (4)将EPCs接种在Transwell小室内与SCs建立共培养体系,设立SCs空白对照组,EPCs与SCs共培养0h、6h、12h、24h、48h不同时间,MTT法检测SCs的增殖情况。 (5)加入各浓度的APS干预共培养体系,用MTT法检测SCs增殖情况;采用浓度为0.4mg/ml的APS干预共培养体系不同的时间,用MTT法检测SCs增殖情况。 结果: (1)大鼠骨髓利用密度梯度离心法分离单个核细胞培养7天,激光共聚焦显微观察DiI-acLDL吞噬及FITC-UEA-1结合双阳性;流式细胞仪检测细胞VEGFR-2/CD34、VEGFR-2/CD133表达的阳性率,证实为EPCs。 (2)APS对大鼠骨髓源性EPCs的数量和增殖能力的影响:APS能明显增加大鼠骨髓源性EPCs的数量和增殖能力,呈一定的量效与时效关系,在浓度为0.1mg/ml时较对照组增强(P<0.05),0.4mg/ml时达高峰(P<0.01)。0.4mg/ml的APS干预12h其影响较对照组明显增强(P<0.01),24h达到最佳效应,48h时略有下降,但仍明显高于对照组(P<0.01)。 (3)APS对SCs增殖能力的影响:APS能明显增加SCs增殖能力,呈一定的量效与时效关系,在浓度为0.05mg/ml时较对照组增强(P<0.05),0.4mg/ml时达高峰(P<0.01)。0.4mg/ml的APS干预6h,其增殖能力开始增强(P<0.05),24h达到最佳效应,48h略有下降,但仍明显高于对照组(P<0.01)。 (4)EPCs对SCs增殖的影响:EPCs能明显增强SCs增殖能力,在共培养6h SCs增殖能力开始增强(P<0.05),12h~24h时间段SCs增殖能力呈时间依赖性增强(P<0.01),24h达到最佳效应,48h略有下降,但仍明显高于对照组(P<0.01)。 (5)APS干预共培养体系,对SCs增殖能力的影响:APS明显增强共培养体系中SCs的增殖能力,呈一定的量效与时效关系,其增殖能力在浓度为0.05mg/ml时开始增强(P<0.05),0.4mg/ml时达高峰。0.4mg/ml的APS干预共培养体系,6小时SCs增殖能力开始增强(P<0.05),24h达到最佳效应,48h略有下降,但仍明显高于对照组(P<0.01)。 结论: (1)大鼠骨髓利用密度梯度离心技术分离出单个核细胞后进行诱导培养,细胞经鉴定证实为EPCs,为后期试验顺利进行奠定了基础。 (2)APS能明显增加EPCs的数量和增殖能力,呈一定的浓度和时间依赖性。 (3)APS能明显增强SCs的增殖能力,呈一定的浓度和时间依赖性。 (4)EPCs能增强SCs增殖能力,呈时间依赖性,其机制可能与EPCs旁分泌各种细胞因子有关。 (5)APS干预EPCs能显著增强SCs增殖能力,呈一定的浓度和时间依赖性,其机制可能与增强了EPCs旁分泌各种细胞因子有关。