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通过紫外聚合将二甲氨基甲基丙烯酸乙酯(DMAEMA)修饰导PLLA膜上,形成DMAEMA—PLLA膜。DMAEMA分子的正电性可使DMAEMA—PLLA膜与带负电的质粒DNA分子结合,形成DNA—DMAEMA—PLLA膜。傅里叶变换衰减全反射红外光谱和X射线光电子能谱显示DMAEMA与PLLA膜的紫外偶联及DNA与DMAEMA—PLLA膜静电结合都是高效的。通过凝胶过滤层析检测交联于PLLA膜上pDMAEMA分子量。酸性橙染色结果表明交联于PLLA膜上的DMAEMA的量随着紫外交联时间的增加而增加并达到某一饱和值。吸附于DMAEMA—PLLA膜上的DNA浓度与DMAEMA的交联浓度呈正比。将L929细胞种植于修饰后的膜上,观察细胞的形态变化,发现L929细胞在DMAEMA—PLLA膜上也不能正常黏附并伸展,而且在培养一定时间段后开始死亡;而在DNA—DMAEMA—PLLA膜上,L929细胞能够黏附并伸展,且生长速度与空白对照一样。溴化二甲基噻唑基二苯基四氮唑(MTT)法检测膜的细胞毒性结果表明DMAEMA—PLLA膜对L929细胞具有较为明显的毒性,而DNA—DMAEMA—PLLA膜的细胞毒性明显减少,可能是由于质粒DNA的负电中和DMAEMA—PLLA膜表面的正电,降低了膜的细胞毒性。用DNA—DMAEMA—PLLA膜上培养细胞后检测其转染效率,发现DMAEMA—PLLA膜能够促进质粒DNA进入细胞并表达,即DMAEMA—PLLA膜能够提高质粒DNA对细胞的转染效率,这个结果以前的文献中还没有报道过。因此,DMAEMA—PLLA膜是一种既能控制细胞形态、又能有效促进原位基因转染的组织工程材料。
作为阳离子聚合物,聚二甲氨基甲基丙烯酸乙酯(pDMAEMA)可用于DNA的包裹和细胞转染实验。然而,pDMAEMA有很强的细胞毒性且其分子机理仍然不清楚。因此,我们分别合成了低分子量的pDMAEMA(2.1KD)和高分子量的pDMAEMA(33KD),研究他们对Hela细胞毒性的分子机制。从MTT实验结果可以看出,分子量越大,其细胞毒性也越大。为了进一步了解其毒性的分子机制,我们做了一下实验:Hoechst 33258染色;FITC—Annexin V和PI双染;caspase 3酶的活性检测及RT—PCR检测BCL-2蛋白的表达等。实验结果表明pDMAEMA可以明显改变Hela细胞的形态并使其DNA浓缩和片断化。并且pDMAEMA处理过的Hela细胞有明显的磷脂酰丝氨酸(PS)外翻现象,并且随着pDMAEMA浓度的增大,PS外翻的细胞量也增多。此外,pDMAEMA还会导致细胞内凋亡关键酶caspase 3蛋白表达量的增加。随着pDMAEMA量的增大,caspase 3蛋白的表达量越多。RT—PCR结果显示pDMAEMA会使Hela细胞BCL-2基因的表达以聚合物浓度依赖的方式减少。以上结果表明:高低两种分子量的pDMAEMA都能通过线粒体通路介导Hela细胞的凋亡,并且高分子量的pDMAEMA导致的凋亡现象比低分子量的明显。