胚胎大鼠神经干细胞体外培养、分化与鉴定的实验研究

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目的:(1)建立简便、易行的胚胎大鼠NSCs体外分离、培养和扩增的方法。(2)鉴定NSCs及诱导分化后的子代细胞,为NSCs的体内移植研究奠定基础。方法:(1)从胚胎大鼠脑组织中分离NSCs,采用神经干细胞克隆悬浮法,选用DMEM/F12培养液,添加无血清培养添加剂b27,细胞生长因子(bFGF和/或EGF)进行体外扩增培养,机械分离连续传代培养,倒置相差显微镜观察细胞形态,细胞生长曲线观察NSCs的增殖能力,并采用免疫荧光细胞化学技术检测NSCs标志物Nestin的表达。(2)观察不同浓度的bFGF、EGF对NSCs增殖的影响,选择最适合NSCs生长的细胞生长因子浓度。(3)以多聚赖氨酸包被盖玻片置于24孔培养板中,将传代培养的NSCs接种于盖玻片上,滴加5%胎牛血清的DMEM/F12培养液,诱导分化培养7天后,用免疫荧光细胞化学技术和免疫细胞化学染色,观察GFAP、β-tubulin-Ⅲ的表达。结果:(1)从胚胎大鼠脑组织分离的细胞在含b27及细胞生长因子bFGF、EGF的无血清DMEM/F12培养液中,能够形成大量悬浮的NSCs克隆球,并可在体外大量扩增和连续传代培养,克隆球经Nestin检测鉴定证实为NSCs。(2)发现不同的细胞生长因子浓度对NSCs的增殖有影响,随着细胞生长因子浓度的增加,NSCs的增殖速度亦随之加快,浓度在20-30ng/ml时细胞增殖速度达到较高水平,因子浓度大于50ng/ml时细胞增殖速度反而下降。(3)胎牛血清共培养7天后,分别做β-tubulin-Ⅲ,GFAP抗体检测,结果显示分化后的细胞部分表达神经元、星形胶质细胞的特异性抗原。
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