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OsLSR是本实验室根据插入位点信息从转Bt基因抗虫水稻T51-1中克隆的一个结实率相关基因。转基因位点旁侧序列测序分析表明，外源Bt基因是插入在OsLSR基因编码区ATG上游797bp处，并导致了OsLSR基因的上调表达和转基因系T51-1结实率的下降，这也是该基因名称OsLSR(Oryza sativa Low Seed-setting Related gene)由来的原因。随后通过反向遗传学对OsLSR基因进行了功能剖析，发现该基因不仅参与免疫应答的信号传递，而且调控花发育过程及影响结实率。 在实验室以上研究的基础上，本研究通过酵母双杂交筛选出与OsLSR互作的蛋白亚硫酸盐氧化酶(OsSO)，并克隆了该基因，初步研究了其功能，主要结果如下: 1.分离克隆水稻的OsSO基因，生物信息学分析表明，该基因位于水稻第8号染色体上，全长1548bp，其中，CDS位于50bp-1243bp，长1194bp，编码398个氨基酸。 2.酵母双杂交实验表明，OsSO完整蛋白与OsLSR完整蛋白存在互作，之后，通过对两个蛋白进行分结构域互作研究发现，OsSO的钼辅因子结构域与OsLSR的CC(Coil-coiled)结构域为两者主要的互作区域。原核表达结果表明，OsSO和OsLSR的CC蛋白在30℃条件下经浓度为1mg/mL的IPTG诱导能实现融合蛋白的高效表达;WesternBbt印迹检测也证实大肠杆菌DE3中表达了分子量分别为43kD和19.8kD的蛋白质，与预测分子量大小基本一致。 3.在烟草(Nicotiana benthamiana)中瞬时表达融合eGFP荧光蛋白的融合蛋白OsSO∷eGFP，发现该融合蛋白主要位于细胞核，在细胞质膜中仅有少量分布。然而当38h后再观察时，无论是在细胞核还是在细胞质膜中都观察不到绿色荧光信号的分布。 4.通过调控OsSO基因表达水平，即由35s启动子驱动的过表达和RNAi干扰的基因沉默，来研究OsSO表达水平与植物免疫系统的关系。实时荧光定量PCR(qRT-PCR)分析表明OsSO的表达上调或下调均能诱导PR基因表达，说明OsSO基因对水稻的免疫应答起调控作用。 5.用亚硫酸钠(Sodium sulfite)盐处理OsSO过表达和RNA干扰叶片，之后，再进行二氨基联苯胺(DAB)染色实验，发现前者的染色比后者浅，表明后者即RNA干扰叶片中的活性氧自由基含量高，使细胞处于胁迫状态。该结果因此说明OsSO会消除植物体内过多的亚硫酸盐而起到解毒作用，以防止植物受到伤害。