糖尿病大鼠肾脏细胞增殖、肥大、凋亡的动态变化及R-A系统阻断剂的影响

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糖尿病肾病(diabetic nephropathy,DN)以早期肾脏体积增大和晚期肾小球硬化为特征。早期肾脏体积增大主要是由细胞增生、肥大共同造成的,细胞的生长状态受细胞周期调节蛋白的调控,包括细胞周期蛋白(Cyclins,如CyclinA、CyclinD、CyclinE等)、细胞周期蛋白激酶(Cyclin-dependent kinase,CDKs,如CDK2、CDK4等)、细胞周期蛋白激酶抑制剂(Cyclin-kinase inhibitors,CKI,如P16、P21、P27等)。随着病变进展,肾脏体积缩小,肾小球结节状硬化,肾小管萎缩,这一过程的发生机制尚未完全阐明。既往曾观察到在糖尿病肾组织中凋亡细胞数增多,并伴随着凋亡相关基因的改变,因此,肾脏细胞的增殖、肥大与凋亡可能参与了糖尿病肾病的发生、发展过程。基础与临床研究表明,肾素-血管紧张素系统(Renin-Angiotensin system,R-A系统)阻断药物如血管紧张素转换酶抑制剂(angiotensin convening enzyme inhibitor,ACEI)和血管紧张素Ⅱ受体Ⅰ拮抗剂(Angiotensin Ⅱ receptor Ⅰ antagonism,AT1Ra)具有明显的肾脏保护作用,但其作用机制未完全阐明。我们应用大鼠糖尿病模型和高糖培养系膜细胞,从整体、细胞和分子等不同水平,系统观察了糖尿病肾组织细胞增殖、肥大、凋亡的动态变化及其调控,以及R-A系统阻断的影响。 1.糖尿病早期肾脏肥大及细胞周期相关基因的表达 应用实验性糖尿病模型和体外培养的系膜细胞,观察糖尿病早期肾脏细胞增殖,肥大及其调控,并采用基因芯片技术,观察糖尿病肾脏肥大期细胞周期相关基因的改变。 SD大鼠随机分为正常对照组和糖尿病(diabetes mellitus,DM)组,DM组大鼠腹腔注射链脲佐菌素(STZ,65mg/kg)制成糖尿病模型,分别于注射STZ后3、5、9、14、30天每组取6只大鼠,称重后收集24h尿;腹腔注射5溴脱氧尿核苷BrdU(100μg/kg),两个小时后处死 中文摘要动物分别留取血清和肾组织,进行光镜观察和图像分析,应用免疫组化检测BrdU掺入率,流式细胞仪测定细胞周期调节蛋白CyClinE、CDKZ、p‘’的表达。 注射 STZ天取材一次,每组取 6只大鼠,无 RNA酶污染条件下取肾皮质混合,一步法提取肾皮质总RNA,OligOAt纤维素抽提和纯化InRNA,对照组和糖尿病组的InRN在逆转录时分别应用Cy3和Cys荧光素标记。将标记了荧光素的CDNA与细胞周期相关基因表达谱芯片杂交,扫描并分析杂交结果。Cts什t3”ratio值在 0.5上刀 H外且一对D皿N>基因表达趋势一致的基因为表达有差异基因,rat。值>2刀表明OM组该基因上调,r扣。值<o.5表明*M组该基因下调。 体外培养系膜细胞哈lomerular mesangial cell,GMC),观察局糖对系膜细胞[‘切胸腺啼咙核昔叮’出-hymidine,[’叨-hy)和[’m亮氨酸叮*-leucine,[’团七u)掺人率的影响,流式细胞术和兔疫组化观察高糖对GMC增殖、肥大的影响及定量检测细胞周期蛋白CyClinE、CDKZ、P”的表达。 结果:l、体视学及肾重/体重比的变化:与对照组相比,肾小球细胞数5天开始增加,9天最多,14天维持9大的高水平,30天时有所减少;肾小球直径从第 5天开始明显增大,14天时平均达 6.8 u m,30天较14天略有增加怕.9 p叫。肾小管细胞数从3天开始增加,其变化趋势与肾小球大致相同;肾小管直径从第3天开始增大,随病程延长逐渐增大;与对照组相比,DM组的肾重/体重比从第5天开始即显著增高,14天达到高峰,第30天仍维持在一较高水平d/肾皮质细胞BrdU掺入率的变化:对照组整个观察过程肾小球、肾小管很少见到BrdU阳性细胞,DM组则小球、小管中均可见到阳性细胞,小球中的阳性细胞数在3天即明显增多,5天达高峰,后逐渐减少,30天恢复到与对照组相当水平。肾小管也有相同趋势。3、肾皮质 CyClind、CDKZ、p”表达的动态变化:对照组CyClinE在5天时显著增高并达高峰,14天时即己降至接近正常水平;CDKZ从 3天到 14天均处于较高水平,峰值在 5无;P”则从 14天才开始升高。4、在差异表达的 19条细胞周期相关基因中,糖尿病组一条基因下调,该基因还与DNA结合、转录有关;上调的18条基因中,还与免疫相关的基因3条,与代谢有关的基因2条, 2 中文摘要 细胞信号和传递蛋白相关基因2条,与细胞骨架和运动相关基因和原癌 抑癌基因各1条,其余均只与细胞周期相关。 细胞培养结果:l、高糖无血清培养 12h的 GMC[’田孔y掺入率较 正常糖无血清培养明显增高,24刁2h则比正常糖浓度组明显降低;入 高糖培养24刁2h的GMC[’m-fen掺入率较正常糖无血清培养明显增高。 工 高糖无血清培养 12h增殖指数较正常糖无血清培养明显增高,24、 48、72 h时两组比较差异无显著性;4、流式细胞和免疫细胞化学结果 发现,与正常糖浓度比较,12h时高糖组 CyClinE、CDKZ表达增强, 随着时间延
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