分化与未分化PC12细胞中的凋亡信号通路特征及低功率激光照射抑制凋亡的分子机制研究

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阿茨海默尔病(Alzheimers disease,AD)是一种神经系统退行性疾病,近年来许多研究发现AD与细胞凋亡关系密切,认为细胞凋亡是AD中神经元退行性死亡的重要途径,因此抑制细胞凋亡成为治疗AD的新方法。尽管对AD形成过程中细胞凋亡的发生已经有了一些研究,比如已经证明肿瘤坏死因子(tumor necrosis factor-a,TNF-a)的合成过量会导致AD等神经性疾病的发生,然而人们对TNF-a造成神经细胞凋亡的分子机制并不了解。此外,有报道用Aβ25-35诱导PC12细胞凋亡作为AD研究的细胞模型证明了低功率激光照射(low-power laser irradiation,LPLI)可以抑制Aβ25-35诱导的PC12细胞的凋亡,从而提出LPLI是未来预防AD的一个可行性方法。但是直到目前为止,对于LPLI抑制凋亡的分子机制却没有研究清楚。 本论文首次采用荧光共振能量转移(fluorescence resonance energy transfer,FRET)技术和实时荧光定量PCR(QT-PCR)技术对TNF-a诱导分化和未分化PC12细胞凋亡的信号通路特征和LPLI抑制凋亡的分子机制进行了细致的研究,主要结果如下: 1、利用激光共聚焦扫描显微镜(LCSM)和QT-PCR技术对TNF-a诱导的分化和未分化PC12细胞凋亡的信号通路进行了深入的研究。实验结果显示,细胞经过TNF-a处理后,Bax的转位和细胞色素C(Cyt c)的释放只发生在分化PC12细胞的凋亡过程中,而不会发生在未分化PC12细胞中,说明分化和未分化PC12细胞的凋亡通路有区别。进一步的研究显示,分化PC12细胞的bim,JNK1,JNK2的mRNA表达比未分化PC12细胞的mRNA表达有明显的上升,而bax的mRNA表达则没有太大的区别,说明JNK和bim这两个蛋白可能是造成区别的原因。接着发现SP600125(JNK的专一抑制剂)可以抑制分化PC12细胞的Bax的转位,却不能抑制分化和未分化PC12细胞的凋亡;Z-IETD-fmk(caspase-8的专一抑制剂)不能抑制分化PC12细胞的Bax的转位,但可以抑制未分化PC12细胞的凋亡;当SP600125和Z-IETD-fmk共同使用时,则两种细胞的凋亡都可以被抑制。这些结果证明分化PC12细胞凋亡的过程中存在着两条凋亡通路,一条是JNK/Bax依赖的线粒体途径,另一条是从caspase-8直接到caspase-3的途径,而未分化PC12细胞中则只有从caspase-8直接到caspase-3的途径。由于分化PC12细胞比未分化PC12细胞更趋近于成熟的神经元细胞,所以这样的结果预示着神经细胞对TNF-a诱导的凋亡更加敏感,且凋亡通路的调控机制更加复杂。 2、采用免疫共沉淀和FRET技术进一步研究了TNF-a诱导分化PC12凋亡的信号通路,探讨了BimL,Bax和Bcl-xL三者之间的关系。实验结果显示,在TNF-a诱导的细胞凋亡过程中Bax和Bcl-xL的相互作用会减弱,BimL和Bcl-xL的相互作用会增加,而BimL不会和Bax发生相互作用。此外,BimL在TNF-a诱导的凋亡过程中没有发生像Bax一样转位到线粒体的现象。这些结果证明在TNF-a诱导的分化PC12细胞凋亡过程中BimL会在线粒体上替换原来被Bcl-xL抑制的Bax,从而让Bax寡聚化,进而引发细胞凋亡。这一结论肯定了BimL在TNF-a诱导神经细胞凋亡过程中的重要作用,并证明了BimL在TNF-a诱导分化PC12细胞凋亡的过程中间接激活了Bax。 3、采用FRET和QT-PCR技术来对LPLI抑制Aβ25-35诱导PC12细胞凋亡的分子机制进行了详细的研究。CCK8和Hoechst 33258染色的实验结果显示0.156 J/cm2-0.624 J/cm2剂量范围的LPLI和25 μM Aβ25-35共处理PC12细胞,对Aβ25-35诱导PC12细胞凋亡的具有抑制作用。利用FRET技术和Western blot技术观察到PKC的活性在LPLI处理后被激活,且这个激活作用可以被G6 6983(PKC的选择性抑制剂)抑制。此外,QT-PCR的实验结果显示,LPLI的处理可以降低bax/bcl-xl mRNA的比值,并且PKC的抑制剂可以使得这个比值再升高。这些结果证明PKC的激活在LPLI对Aβ25-35诱导PC12细胞猾亡的抑制作用中的重要作用,这一结论对LPLI成为预防AD的一种方法提供了有力的理论依据,有助于将来更好的利用LPLI去预防AD。
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