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该研究构建了海带表达r-PA的质粒pSVrPA/C-B,采用基因枪法将带有r-PA基因的质粒导入海带雌配子体,经过鉴定得到有溶栓活性的海带孢子体,初步建立了海带表达r-PA或其它生物药物的技术平台.大肠杆菌表达系统具有生长周期短,表达量高的优点,用于表达r-PA的主要难点在于分离纯化和复性工艺,因此该文还同时对寻找新的大肠杆菌表达r-PA的纯化复性工艺进行了初步的探索,首次将复性色谱用于r-PA的体外复性.该研究包括了两部分工作,第一部分是关于r-PA在海带中表达的研究.这部分研究主要包括了以下工作:1.通过PCR、酶切、连接、转化等分子生物学方法构建了能够在海带中表达r-PA的质粒pSVrPA/C-B,其特征是采用两个不同的启动子分别启动筛选标记基因和目的基因,bar基因作为筛选标记基因,位于CaMV 35S启动子下游,r-PA基因插入到SV40启动子下游;r-PA基因两端包含多克隆酶切位点(MCS),可以方便的插入其他外源基因,为进一步研究奠定基础.2.用PCR、Southern Blotting和纤维平板法鉴定转r-PA基因海带孢子体.在五批38株海带孢子体中,活性检出率平均达到40﹪,PCR及PCR Southern Blotting检测阳性一株,基因组Southern Blotting检测则无阳性结果.第二部分是关于r-PA在大肠杆菌中融合表达以及纯化复性的初步探索,这部分研究主要包括如下工作:1.构建了r-PA大肠杆菌融合表达的质粒pET32-rPA,r-PA基因位于组氨酸标签(His<,6>·Tag)下游.转化大肠杆菌BL21(DE3),用乳糖进行诱导表达,融合蛋白以包涵体形式存在,表达量达到40﹪.2.对r-PA融合蛋白的诱导表达条件进行了摸索.发现乳糖和IPTG诱导效果相当,综合考虑生产成本,选用乳糖为诱导剂.对诱导剂浓度、诱导时间、诱导温度、氨苄浓度做正交试验,选择诱导温度35℃,乳糖浓度10mM,诱导时间4h,氨苄浓度30μg/ml为诱导表达条件.3.采用金属螯合色谱(Immobilized metal affinity chromatography,IMAC)柱上复性方法对r-PA融合蛋白进行了初步纯化和体外复性.经过一步纯化,融合蛋白纯度达到80﹪.Western结果表明融合蛋白能和t-PA(C-16)羊多抗特异性结合.