【摘 要】
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探讨鸭瘟弱毒苗在不同途径免疫鸭体内侵染、增殖和排泄规律，鸭病毒性肠炎病毒（DEV）弱毒Cha株经皮下、口服和滴鼻途径免疫20日龄樱桃谷鸭后，应用TaqMan-MGB 探针实时荧光定量PCR（FQ-PCR）对实验鸭免疫后第10、30、60、90分钟、第12、24小时和第6、9、12、21、36、60天的心、肝、脾、肺、肾、脑、胸腺、法氏囊、哈德氏腺、回盲处、血液、气管、气管分泌液、食管及其分泌液、十
【机 构】
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四川农业大学动物科技学院禽病防治研究中心,雅安 625014 动物疾病与人类健康四川省重点实验室,雅安 625014
【出 处】
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中国畜牧兽医学会动物传染病学分会教学专业委员会第六届第12次学术研讨会
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探讨鸭瘟弱毒苗在不同途径免疫鸭体内侵染、增殖和排泄规律，鸭病毒性肠炎病毒（DEV）弱毒Cha株经皮下、口服和滴鼻途径免疫20日龄樱桃谷鸭后，应用TaqMan-MGB 探针实时荧光定量PCR（FQ-PCR）对实验鸭免疫后第10、30、60、90分钟、第12、24小时和第6、9、12、21、36、60天的心、肝、脾、肺、肾、脑、胸腺、法氏囊、哈德氏腺、回盲处、血液、气管、气管分泌液、食管及其分泌液、十二指肠、空肠、回肠、肓肠、直肠及各肠段分泌液中DEV-DNA拷贝数（以对数值表示）进行检测。结果显示：不同途径免疫DEV弱毒苗均可在免疫后第60分钟内分布于重要免疫器官，其中皮下免疫DEV弱毒苗分布最迅速，DEV-DNA拷贝数最高。免疫后第60分钟至12小时，DEV弱毒苗可在所有免疫鸭受检组织中检出（25/25）。其中口服和滴鼻免疫DEV弱毒苗均较皮下免疫更为迅速分布于机体消化道组织及其分泌液。所有免疫鸭心、脑、十二指肠、盲肠中的DEV-DNA拷贝数均显著大于其它受检组织器官(P<0.05)。免疫后第60分钟至第6天时，各受检组织器官中DEV-DNA拷贝数达到最高值后开始持续降低，至第60天时，依然可在包括免疫器官在内的多个组织器官中检出DEV-DNA。研究表明，DEV弱毒苗在各组织器官中的分布增殖规律与免疫的途径、鸭的解剖结构密切相关。免疫鸭于免疫早期在包括主要免疫器官、消化道和呼吸道黏膜在内的各组织器官中DEV数量的迅速增加是DEV弱毒苗迅速产生系统免疫和局部黏膜免疫力的主要原因。
其他文献
为了认识肠炎沙门氏菌在胃肠道中的动态分布情况及其主要侵入位点，我们根据GenBank登录的肠炎沙门氏菌种特异性DNA序列建立了能特异检测该菌的FQ-PCR诊断方法，并利用该法检测经口服感染小鼠的胃肠道组织，包括十二指肠、空肠、回肠、盲肠、结肠、直肠、食道和胃。结果显示，胃肠道的所有位点均能检测到该菌；空肠和回肠在感染后8小时被检测到；18小时被检测到呈阳性的组织为胃；肠炎沙门氏菌的DNA 拷贝数在
本项研究选用1日龄雏鸭，胫静脉接种DHBV阳性的血清，复制疾病模型，进行系统的病理学研究，旨在观察病变器官组织和血液生化指标的动态变化，明确病变特征及生化指标变化规律；采用已建立的FQ-PCR和免疫组化方法研究DHBV在感染鸭体内的侵染过程和分布，建立标准化疾病模型，为DHBV模型应用于探讨HBV的发病机理和药物筛选提供科学的理论依据。结果显示，在感染后3～52d内的不同时间点从肝脏、胰腺、肾脏、
为探讨鸭瘟弱毒苗诱导鸭局部黏膜和系统免疫中抗体发生的规律，将将DPV弱毒苗Cha株经皮下、口服和滴鼻途径免疫20日龄樱桃谷鸭后60天内定时随机剖杀5只鸭，采集血清、气管和消化道（食道、十二指肠、空肠和直肠）分泌液，应用间接ELISA检测抗DPV的IgA、IgM和IgG抗体滴度（以Log10表示）。所有免疫鸭检测样品中均可检测到DPV特异性IgG、IgM和IgA抗体。血清中抗体滴度由高到低均为IgG
pET32a-σC重组菌大量诱导表达后产物用低压液相层析仪进行组氨酸标签的过柱纯化，在100mM咪唑buffer洗脱下来的蛋白较纯，测得其蛋白的含量为150μg/ml。用本实验室建立好的σC-ELISA方法对免疫的动物在13、20和35日龄分别采集血清进行抗体的检测分析，从抗体的水平看二免后蛋白质免疫组的抗体转阳率（73.33％）高于S1133全菌灭活苗组（63.33％），而从整体抗体的平均值水平
采用软件DNAStar Protean程序，综合运用二级结构、亲水性、可塑性和抗原性指数等参数，对本实验室所发现的鸭肠炎病毒（Duck enteritis virus,DEV）CHv毒株UL6基因（GenBank登录号EF055890）的氨基酸序列进行B细胞表位预测，分析结果显示UL6蛋白羧基端第Thr507-Gln515、Thr521-Met529、Asp531-Phe539、Gly544-As
dUTPase是一种催化水解脱氧尿苷三磷酸（dUTP)为脱氧尿苷单磷酸（dUMP）的普遍存在的重要水解酶。许多病毒编码病毒特异的dUTPase，通过降低细胞中的dUTP水平，减少dUTP在DNA合成中的插入和错配并为DNA的合成提供必需的原料(dTTP)，在保证病毒DNA复制的正确性和顺利进行上起了重要作用。本文首次报道了一个大小为1344bp，与疱疹病毒dUTPase 同源的鸭病毒性肠炎病毒dU
定量检测肠炎沙门氏菌（SE）不同途径感染雏鸭后消化道内大肠杆菌属的动态变化规律。鸭源肠炎沙门氏菌（SE）经口服、滴鼻和皮下注射感染7日龄雏鸭后，运用TaqMan探针实时荧光定量PCR（FQ-PCR）对SE感染后30min、1h、2h、4h、8h、12h、24h、36h、48h、72h、6d、9d无菌采集的每1cm十二指肠、空肠、回肠、盲肠和直肠各肠段内大肠杆菌属DNA拷贝数（以对数值表示）进行检测
定量检测肠炎沙门氏菌（SE）不同途径感染雏鸭后消化道内葡萄球菌属的动态变化规律。鸭源肠炎沙门氏菌（SE）经口服、滴鼻和皮下注射感染7日龄雏鸭后，运用TaqMan探针实时荧光定量PCR（FQ-PCR）对SE感染后30min、1h、2h、4h、8h、12h、24h、36h、48h、72h、6d、9d无菌采集的每1cm十二指肠、空肠、回肠、盲肠和直肠各肠段内葡萄球菌属DNA拷贝数（以对数值表示）进行检测
以鸭源致病性肠炎沙门氏菌（SE）为抗原免疫兔制备兔抗SE高免血清，并以High-Q离子交换层析纯化获得兔抗SEIgG，建立了间接免疫荧光染色法（IFA）检测石蜡切片中SE的方法。并应用建立的方法对SE人工感染死亡或濒死雏鸭的各个组织器官进行检测，结果表明，在哈氏腺、心脏、肾脏、肝脏、脾、脑以及空肠、回肠、法氏囊中可以检测到SE抗原，并且抗原主要分布于感染细胞的细胞质。免疫荧光染色技术检测石蜡切片中
为探讨鸭瘟强毒感染诱导鸭局部黏膜和免疫器官中IgA细胞水平变化的规律，将雏鸭于皮下、口服和滴鼻感染DPV强毒后3、6、9、12、15、21天宰杀，应用间接免疫过氧化物酶组织化学染色法（IISM）对消化道、呼吸道和主要免疫器官中 IgA生成细胞和IgA进行定位检测。结果显示：DPV皮下感染鸭后，各组织器官中IgA生成细胞数量下降或变化不明显。口服和滴鼻感染鸭小肠黏膜固有层中IgA生成细胞数量于感染后